品牌 | SOLARBIO/索萊寶 | CAS | 詳詢 |
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分子式 | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
分子量 | 詳詢 | 貨號 | BC0350 |
規(guī)格 | 50管/48樣 | 供貨周期 | 現(xiàn)貨 |
主要用途 | 測定原理:GST催化GSH與CDNB結(jié)合,其結(jié)合產(chǎn)物的光吸收峰波長為340nm; | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),綜合 |
GU胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(GST)活性檢測試劑盒說明書
紫外分光光度法
注意:本產(chǎn)品試劑有所變動,請注意并嚴(yán)格按照該說明書操作。
貨號:BC0350
規(guī)格:50T/48S
產(chǎn)品組成:使用前請認(rèn)真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
試劑一 | 液體60 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 液體55 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑三 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃保存 |
溶液配制:
試劑三:臨用前加6 mL蒸餾水溶解,2-8℃保存4周。
產(chǎn)品說明:
GU胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)是一種具有多種生理功能的蛋白質(zhì)家族,主要存在于細(xì)胞質(zhì)內(nèi)。GST是體內(nèi)解毒酶系統(tǒng)的重要組成部分,主要催化各種化學(xué)物質(zhì)及其代謝產(chǎn)物與GSH的巰基共價結(jié)合,使親電化合物變?yōu)橛H水物質(zhì),易于從膽汁或尿液中排泄,達(dá)到將體內(nèi)各種潛在或具備毒性的物質(zhì)降解并排出體外的目的。因此,GST在保護(hù)細(xì)胞免受親電子化合物的損傷中發(fā)揮著重要的生物學(xué)功能。此外,因?yàn)?/span>GST具有GSH-Px活性,亦稱為non-Se GSH-Px,具有修復(fù)氧化破壞的大分子如DNA、蛋白質(zhì)等的功能。注意,GST催化的反應(yīng)減少GSH含量,但是不增加*含量。
GST催化GSH與CDNB結(jié)合,其結(jié)合產(chǎn)物的光吸收峰波長為340nm;通過測定340nm波長處吸光度上升速率,即可計(jì)算出活性。
注意:實(shí)驗(yàn)之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實(shí)驗(yàn)。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測。
需自備的儀器和用品:
紫外-可見分光光度計(jì)、低溫離心機(jī)、水浴鍋/培養(yǎng)箱、可調(diào)節(jié)移液器、研缽/勻漿器/細(xì)胞超聲破碎儀、1mL石英比色皿、冰和蒸餾水。
“具體操作步驟詳見“產(chǎn)品資料"附件"
注意事項(xiàng):
1. 樣本處理等過程均需要在冰上進(jìn)行,且須在當(dāng)日測定酶活力;
2. 細(xì)胞中GST活性測定時,細(xì)胞數(shù)目須在300萬-500萬之間,細(xì)胞中GST的提取時可加試劑一后研磨或超聲波處理,不能用細(xì)胞裂解液處理細(xì)胞;
3. 若樣本測定吸光度大于1,建議將樣本用蒸餾水稀釋,計(jì)算時結(jié)果乘以稀釋倍數(shù);
4. 測定反應(yīng)的溫度對測定結(jié)果有影響,請將反應(yīng)溫度控制在37℃。
實(shí)驗(yàn)實(shí)例:
取0.1g月季花朵加入1mL試劑一進(jìn)行冰浴勻漿,8000g,4℃離心10min,取上清,稀釋50倍置冰上待測,按照測定步驟操作,測得計(jì)算ΔA =(A2測定-A1測定)-(A2空白-A1空白)=(0.647-0.587)-(0.591-0.539)=0.008,按樣本質(zhì)量計(jì)算得:
GST活性(U/g 質(zhì)量)=0.23×ΔA÷W×50(稀釋倍數(shù))=0.92 U/g 質(zhì)量。
取0.1g小鼠肝臟樣本加入1mL試劑一進(jìn)行冰浴勻漿,8000g,4℃離心10min,取上清,稀釋500倍置冰上待測,按照測定步驟操作,測得計(jì)算ΔA =(A2測定-A1測定)-(A2空白-A1空白)=(0.824-0.543)-(0.591-0.539)=0.229,按樣本質(zhì)量計(jì)算得:
GST活性(U/g 質(zhì)量)=0.23×ΔA÷W×500(稀釋倍數(shù))=263.35 U/g 質(zhì)量。
相關(guān)發(fā)表文獻(xiàn):
Wensu Han,Yemeng Yang,Jinglin Gao,et al. Chronic toxicity and biochemical response of Apis cerana cerana (Hymenoptera: Apidae) exposed to acetamiprid and propiconazole alone or combined. Ecotoxicology. May 2019:28(4):399-411.(IF2.46)
Zhi Zhou,Xiaopeng Yua,Jia Tang,et al. Systemic response of the stony coral Pocillopora damicornis against acute cadmium stress. Aquatic Toxicology. January 2018;(IF3.794)
Le Guan,Muhammad Salman Haider,Nadeem Khan,et al. Transcriptome Sequence Analysis Elaborates a Complex Defensive Mechanism of Grapevine (Vitis vinifera L.) in Response to Salt Stress. International Journal of Molecular Sciences. December 2018;(IF4.183)
Xing Wei,Xuejun Mo,Faliang An,et al. 2′,4′-Dihydroxy-6′-methoxy-3′,5′-*, a potent Nrf2/ARE pathway inhibitor, reverses drug resistance by decreasing glutathione synthesis and drug efflux in BEL-7402/5-FU cells. Food and Chemical Toxicology. September 2018;(IF3.775)
Qiuli OuYang,Nengguo Tao,Miaoling Zhang. A Damaged Oxidative Phosphorylation Mechanism Is Involved in the Antifungal Activity of Citral against Penicillium digitatum. Frontier in Immunology. February 2018;(IF4.259)
Chunsheng Li,Xianqing Yang,Ying Xu,et al. Cadmium detoxification induced by salt stress improves cadmium tolerance of multi-stress-tolerant Pichia kudriavzevii. Environmental Pollution. November 2018;(IF5.714)
Xiao Hui Xu,Yinghui Guo,Hongwei Sun,et al. Effects of Phytase Transgenic Maize on the Physiological and Biochemical Responses and the Gut Microflora Functional Diversity of Ostrinia furnacalis. Scientific Reports. March 2018;(IF4.011)
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