品牌 | SOLARBIO/索萊寶 | CAS | 詳詢 |
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分子式 | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
分子量 | 詳詢 | 貨號 | BC5955 |
規(guī)格 | 100T/96S | 供貨周期 | 現(xiàn)貨 |
主要用途 | 異檸檬酸含量檢測 | 應用領(lǐng)域 | 環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),綜合 |
異檸檬酸含量檢測試劑盒說明書
微量法
貨號:BC5955
規(guī)格:100T/96S
產(chǎn)品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液一 | 液體110 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
提取液二 | 液體20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 液體250 μL×1支 | 2-8℃保存 |
試劑三 | 2-8℃保存 | |
粉劑一 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃保存 |
標準品 | 粉劑×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 試劑二工作液:臨用前先離心,根據(jù)樣本量按試劑二:蒸餾水=10μL:90μL(共100μL,約5T)的比例配制后使用,現(xiàn)配現(xiàn)用。
2、 試劑三:臨用前加入1.3 mL蒸餾水充分溶解,未用完的試劑-20℃分裝保存4周,避免反復凍融。
3、 標準品:臨用前加入1 mL蒸餾水充分溶解成20μmol/mL異檸檬酸標準品。
4、 工作液:臨用前根據(jù)樣本量按試劑一:試劑二工作液:試劑三=150μL:20μL:10μL(共180μL,約1T)配成工作液后使用,現(xiàn)配現(xiàn)用。
產(chǎn)品說明:
異檸檬酸(Isocitric Acid)是檸檬酸的異構(gòu)體,在許多水果和蔬菜以及由這些原料制成的食品中發(fā)現(xiàn)了大量的異檸檬酸鹽。生物能夠利用的是D型異檸檬酸,是三羧酸循環(huán)中的一個成分。
異檸檬酸在異檸檬酸脫氫酶(ICDH,EC1.1.1.41)的作用下變成a-酮戊二酸,同時NAD(P)還原為NAD(P)H,據(jù)此可以計算異檸檬酸含量。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
紫外分光光度計/酶標儀、微量石英比色皿/96孔UV板、天平、低溫離心機、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、 樣本處理(可適當調(diào)整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
組織:按照質(zhì)量(g):提取液一體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g,加入1mL提取液一)加入提取液一,冰浴勻漿后于4℃,12000g離心10min,取0.8mL上清液,再緩慢加入0.15mL提取液二,緩慢吹打混勻至無氣泡產(chǎn)生,4℃ 12000g離心10min后取上清待測。(提取液二需緩慢加入,加入后會產(chǎn)生大量氣泡,建議使用2mL EP管進行操作。)
細菌或細胞:收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清;按照細菌或細胞數(shù)量(106個):提取液體積(mL)為5~10:1的比例(建議5×106個細胞加入1mL提取液一),冰浴超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3秒,間隔7秒,總時間3min);于4℃,12000g離心10min,取0.8mL上清液,再緩慢加入0.15mL提取液二,緩慢吹打混勻至無氣泡產(chǎn)生,4℃ 12000g離心10min后取上清待測。(提取液二需緩慢加入,加入后會產(chǎn)生大量氣泡,建議使用2mL EP管進行操作。)
果汁等液體:取500μL液體樣本,加1mg粉劑一混勻后沸水浴5min(纏封口膜,防止爆蓋),靜置至室溫后于4℃ 12000g離心10min,取上清待測。
二、測定步驟
1、 紫外分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至340nm,分光光度計用蒸餾水調(diào)零。
2、 工作液37℃預熱10min以上。
3、 標準品的稀釋:將20μmol/mL異檸檬酸標準品用蒸餾水進行稀釋得到12、10、8、4、2、1、0.5μmol/mL標準品備用。
4、 標準品稀釋表:
序號 | 稀釋前濃度(μmol/mL) | 標準品體積(µL) | 蒸餾水體積(µL) | 稀釋后濃度(μmol/mL) |
1 | 20 | 300 | 200 | 12 |
2 | 20 | 300 | 300 | 10 |
3 | 10 | 400 | 100 | 8 |
4 | 8 | 200 | 200 | 4 |
5 | 4 | 200 | 200 | 2 |
6 | 2 | 200 | 200 | 1 |
7 | 1 | 200 | 200 | 0.5 |
備注:下述實驗中每個標準管需20µL標準品(注意不要在此步驟直接檢測標準品吸光度)。
5、 樣本測定(在微量石英比色皿/96孔UV板中加入下列試劑)
試劑名稱(μL) | 測定管 | 標準管 | 空白管 |
樣本 | 20 | - | - |
標準品 | - | 20 | - |
蒸餾水 | - | - | 20 |
工作液 | 180 | 180 | 180 |
充分混勻,立即測定340nm下10s時的吸光度A1,然后迅速置于37℃反應10min(酶標儀有控溫功能的可以將溫度調(diào)至37℃),測定10min10s時的吸光度A2,分別記為A1測定、A2測定、A1標準、A2標準、A1空白、A2空白。計算ΔA標準=(A2標準-A1標準)-(A2空白-A1空白),ΔA測定=(A2測定-A1測定)-(A2空白-A1空白)。每個標準管和空白管只需測1-2次。 |
三、異檸檬酸含量計算公式
1. 標準曲線的繪制
根據(jù)標準管的濃度(x,μmol/mL)和吸光度ΔA標準(y,ΔA標準),建立標準曲線。根據(jù)標準曲線,將ΔA測定(y,ΔA測定)帶入公式計算樣本濃度(x,μmol/mL)。
2. 異檸檬酸含量計算:
(1)按樣本蛋白濃度計算:
異檸檬酸含量(μmol/g prot)=x×V樣本÷(Cpr×V樣本)×F=x÷Cpr×F
(2)按樣本質(zhì)量計算:
異檸檬酸含量(μmol/g 質(zhì)量)=x×(V上清+V提取液二)÷(W×V上清÷V提取液一)×F=1.1875×x÷W×F
(3)按細菌或細胞數(shù)量計算:
異檸檬酸含量(μmol/106 cell)= x×(V上清+V提取液二)÷(N×V上清÷V提取液一)×F=1.1875×x÷N×F
(4)按液體體積計算:
異檸檬酸含量(μmol/mL)=x×F
V樣本:加入的樣本體積,0.02mL;V上清:提取時上清液體積,0.8mL;V提取液二:加入提取液二的體積,0.15mL;V提取液一:加入的提取液一體積,1mL;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g;N:細胞數(shù)量,以百萬計;F:稀釋倍數(shù)。
注意事項:
1.最好兩個人同時做此實驗,一個人比色,一個人計時,以保證實驗結(jié)果的準確性。
2.若樣本ΔA<0.005,可適當增大樣本量后測定;若樣本ΔA>1.0或A測定>1.5,可用蒸餾水稀釋上清液后測定,
注意同步修改計算公式中的稀釋倍數(shù)。
3.提取液一中含有蛋白質(zhì)沉淀劑,因此上清液不能用于蛋白濃度測定,如需測定蛋白濃度,需另取組織。
實驗實例:
1、 取0.1139g蘋果加入提取液進行冰浴勻漿,取上清后按照測定步驟操作,用96孔UV板測得ΔA測定=(A2測定-A1測定)-(A2空白-A1空白)=(0.140-0.089)-(0.060-0.058)=0.049,帶入標曲y=0.0658x-0.0178,R2=0.9978,計算x=1.015,按樣本質(zhì)量計算異檸檬酸含量得:
異檸檬酸含量(μmol/g 質(zhì)量)=1.1875×x÷W×F=10.582 μmol/g 質(zhì)量。
2、 取0.1033g橙子葉加入提取液進行冰浴勻漿,取上清用蒸餾水稀釋2倍后按照測定步驟操作,用96孔UV板測得ΔA測定=(A2測定-A1測定)-(A2空白-A1空白)=(1.445-1.415)-(0.060-0.058)=0.028,帶入標曲y=0.0658x-0.0178,R2=0.9978,計算x=0.696,按樣本質(zhì)量計算異檸檬酸含量得:
異檸檬酸含量(μmol/g 質(zhì)量)=1.1875×x÷W×F=16.002 μmol/g 質(zhì)量。
3、 取500μL橙汁飲料取上清后按照測定步驟操作,用96孔UV板測得ΔA測定=(A2測定-A1測定)-(A2空白-A1空白)=(0.523-0.516)-(0.060-0.058)=0.005,帶入標曲y=0.0658x-0.0178,R2=0.9978,計算x=0.347,按樣本質(zhì)量計算異檸檬酸含量得:
異檸檬酸含量(μmol/mL)=x×F=0.347 μmol/mL。
參考文獻:
[1] Kvasni Ka, Franti Ek, et al. "Determination of Isocitric Acid in Citrus Juice—A Comparison of HPLC, Enzyme Set and Capillary Isotachophoresis Methods." Journal of Food Composition & Analysis 15.6(2002):685-691.
[2] Kong, Min Jung, et al. "Mitochondrial NADP+-dependent isocitrate dehydrogenase deficiency increases cisplatin-induced oxidative damage in the kidney tubule cells." Cell Death & Disease 9.5(2018):488.
相關(guān)系列產(chǎn)品:
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